Антимюллеров гормон: расширение границ использования в современной клинической практике
РезюмеВ обзоре литературы представлены современные данные о диагностической, прогностической и терапевтической значимости антимюллерова гормона (АМГ) как универсального биомаркера в репродуктивной медицине и смежных областях, включая эндокринологию, онкологию, педиатрию и андрологию. В рамках данного обзора проводится систематизация данных о биологической функции АМГ, анализируются методологические аспекты его количественного определения, а также оцениваются возможности, ограничения и потенциальные перспективы применения АМГ в современной клинической практике.
Ключевые слова:антимюллеров гормон; вспомогательные репродуктивные технологии; биомаркер
Финансирование: Исследование не имело спонсорской поддержки.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Вклад авторов. Разработка концепции: формирование идеи, формулировка и развитие ключевых целей и задач - Митюрина Е.В.; сбор данных, подбор литературы по заявленной теме, обработка материала, написание текста - Филимонова Е.И.; редактирование, утверждение рукописи для публикации - Митюрина Е.В., Перминова С.Г.; участие в научном дизайне, подготовка, создание опубликованной работы - Филимонова Е.И., Оганян К.А.
Для цитирования: Митюрина Е.В., Филимонова Е.И., Перминова С.Г., Оганян К.А. Антимюллеров гормон: расширение границ использования в современной клинической практике // Акушерство и гинекология: новости, мнения, обучение. 2026. Т. 14, № 2. С. 79-84. DOI: https://doi.org/10.33029/2303-9698-2026-14-2-79-84
Введение
Антимюллеров гормон (Anti-Müllerian hormone, АМГ) в последние десятилетия приобрел статус одного из наиболее значимых биомаркеров репродуктивной функции человека. Изначально определение концентрации АМГ в крови использовалось исключительно в рамках вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) для количественной оценки овариального резерва. Однако объем современных научных данных о его диагностической, прогностической и терапевтической роли стремительно расширяется. В настоящее время АМГ рассматривается как междисциплинарный маркер, обладающий диагностической значимостью не только в репродуктивной медицине, но в онкологии, эндокринологии, педиатрии и андрологии, что позволяет характеризовать его как универсальный биологический индикатор.
Как правило, определение уровня АМГ используется для оценки овариального резерва и индивидуализации протоколов овариальной стимуляции, прогнозирования вероятности ранней и естественной менопаузы, диагностики синдрома поликистозных яичников, мониторинга функции яичников у онкологических пациенток до и после гонадотоксичной терапии, диагностики нарушений дифференцировки пола в педиатрической практике, а также анализа функции клеток Сертоли и сперматогенеза у мужчин и подростков [1-6]. Интерес к изучению АМГ распространяется и на создание прогностических моделей. Так, современные работы подтверждают его ценность для расчета вероятности получения требуемого количества ооцитов при овариальной стимуляции, риска синдрома гиперстимуляции яичников, вероятности овариальной недостаточности после химиотерапии [7-9].
Следует отметить, что, несмотря на широкое использование в различных областях современной медицины, АМГ остается маркером, требующим корректной интерпретации. Ограничениями являются межметодная вариабельность и отсутствие единого стандарта между различными лабораторными системами [3, 10, 11].
Биология и физиология антимюллерова гормона
АМГ относится к суперсемейству трансформирующих факторов роста (TGF-β) и представляет собой димерный гликопротеин. При активации от молекулы АМГ отделяется биологически активный фрагмент с молекулярной массой 25 кДа. Гормон связывается с рецептором типа 2 (АMHR2), что запускает сигнальный каскад с участием SMAD‑белков. Этот каскад регулирует процессы дифференцировки, пролиферации и апоптоза клеток гонадных тканей. Уникальность АМГ состоит в его выраженной тканевой специфичности: гормон синтезируется исключительно гранулезными клетками в яичниках и клетками Сертоли в яичках, что и формирует его диагностическую ценность [12].
Роль антимюллерова гормона в женской репродуктивной системе
АМГ экспрессируется гранулезными клетками преовуляторных и ранних антральных фолликулов. Секреция гормона начинается после активации примордиального фолликула, достигает пика в стадии мелких антральных фолликулов, а затем идет на спад, когда один из фолликулов становится доминантным и готовится к овуляции. Таким образом, уровень АМГ в сыворотке крови отражает совокупное количество растущих фолликулов, а значит - косвенно и объем овариального резерва [1].
Уровень АМГ меняется в зависимости от возраста женщины. В детстве его концентрация очень низкая. Когда девочка вступает в период полового созревания, уровень АМГ начинает расти и достигает максимума примерно к 20-25 годам. После этого он постепенно снижается, что связано с уменьшением числа фолликулов в яичниках. Исследования возрастных номограмм демонстрируют экспоненциальное падение концентрации АМГ в течение репродуктивной жизни, что делает гормон важным маркером для оценки репродуктивного старения и вероятного времени наступления менопаузы [2].
Следует отметить, что АМГ оказывает важную регуляторную функцию на уровне фолликулогенеза. Он тормозит активацию примордиальных фолликулов, предотвращая их чрезмерный переход в растущие фолликулы, тем самым обеспечивает экономное использование овариального пула [13]. Другими словами, АМГ участвует в защите фолликулярного резерва и определяет скорость его расходования на протяжении репродуктивной жизни женщины [14]. Кроме этого, АМГ снижает чувствительность фолликулов к воздействию фолликулостимулирующего гормона (ФСГ) на ранних этапах фолликулогенеза. Этот механизм предотвращает преждевременное доминирование отдельных фолликулов и обеспечивает контролируемый отбор доминантного фолликула в рамках нормального менструального цикла [12].
Факторы, ассоциированные со снижением уровня АМГ: возрастное истощение овариального резерва [14]; последствия гонадотоксичного лечения [4, 15, 16]; оперативные вмешательства на яичниках [17]; эндометриоз [18]; генетические мутации, влияющие на регуляцию фолликулогенеза [19, 20].
Особенности физиологии антимюллерова гормона у мужчин
АМГ у мужчин является маркером функции клеток Сертоли. Его продукция максимальна в период младенчества и детства, а затем снижается по мере созревания семенных канальцев и повышения концентрации тестостерона и ингибина-B. В отличие от женщин, АМГ у мужчин не отражает резерв гамет, но служит ключевым индикатором развития и функционирования семенников [21].
Согласно современным клиническим данным, диагностическая ценность АМГ у мужчин существенно варьирует в зависимости от возрастного периода. В неонатальном и младенческом периодах определение АМГ позволяет верифицировать наличие функционирующей тестикулярной ткани и проводить дифференциальную диагностику нарушений формирования пола. В детском возрасте исследование применяется в диагностике анорхизма, крипторхизма и гипогонадизма. В пубертатном периоде уровень АМГ служит индикатором созревания клеток Сертоли. У взрослых пациентов системное определение АМГ имеет ограниченную ценность для оценки сперматогенеза, тогда как локальная концентрация гормона в семенной плазме демонстрирует достоверную корреляцию с параметрами эякулята (подвижность и концентрация сперматозоидов), что приобретает особую значимость в контексте диагностики мужского бесплодия [6].
Методы измерения антимюллерова гормона и их стандартизация
Лабораторная измерительная вариабельность выступает одним из ключевых факторов, влияющих на точность определения уровня АМГ и последующую клиническую интерпретацию полученных данных. В настоящее время отсутствует единый международный стандарт, обеспечивающий сопоставимость результатов, полученных различными методами измерения, что представляет собой основное ограничение использования АМГ в клинической практике. При проведении анализа необходимо принимать во внимание тип аналитической платформы, метод детекции и систему калибровки - без учета этих параметров сопоставление результатов между различными пациентами и медицинскими учреждениями может оказаться некорректным [10].
Эволюция лабораторных тестов антимюллерова гормона
Исторически первыми диагностическими системами были тесты для проведения иммуноферментного анализа (ELISA) с преобладанием ручных манипуляций, которые позволили ввести АМГ в клиническую практику, но обладали недостаточной чувствительностью и значительной межсерийной вариабельностью. С развитием ВРТ возникла необходимость в более точных и воспроизводимых тестах, что привело к появлению автоматизированных иммунохемилюминесцентных анализаторов, обеспечивающих высокую стабильность получаемых данных и меньшее влияние человеческого фактора.
На рынке доминируют 3 аналитические платформы: Beckman Coulter (Access АМГ), Roche (Elecsys АМГ), AnshLabs (picoАМГ, AL-124). Несмотря на то что все системы используют антитела к рекомбинантному АМГ, между ними выявляются значимые аналитические различия. Результаты сравнительных исследований демонстрируют систематические расхождения при сопоставлении данных, полученных с помощью разных методик, - в отдельных когортных работах отклонения достигают 20-40%. Это подчеркивает необходимость строгого учета применяемого метода измерения как в научных исследованиях, так и в клинической практике [22].
Работа J. van Helden и соавт. (2015) показала, что значения АМГ, измеренные Roche Elecsys, в среднем ниже значений, полученных при использовании системы Beckman Coulter, при этом расхождения увеличиваются при низких концентрациях гормона, что особенно важно у пациенток со сниженным овариальным резервом и онкологических больных. Аналогично анализ АМГ платформой AnshLabs picoАМГ демонстрировал более высокую чувствительность к низким концентрациям и рекомендовался для мониторинга овариального резерва после химиотерапии. Однако его значения также несопоставимы напрямую с другими тестами [23].
Таким образом, при необходимости мониторинга АМГ в динамике следует использовать одну и ту же платформу в пределах всей серии измерений. Переход на другую систему без пересчета может привести к ложным выводам об изменении овариального резерва, эффективности протокола экстракорпорального оплодотворения либо последствий противоопухолевого лечения.
Анализ публикаций и международных рекомендаций позволяет сформулировать ключевые стандарты при работе с АМГ [24]:
- АМГ можно измерять в любой день менструального цикла.
- Измерения должны проводиться одной и той же аналитической платформой.
- В заключении анализа необходимо указывать метод, референсные значения и возрастную интерпретацию.
- Недопустимо прямое сравнение значений между разными лабораториями без эквивалентных референсных диапазонов.
АМГ является высокоинформативным биомаркером, но требует строгого соблюдения аналитически корректного подхода. Клиническая ошибка в интерпретации часто обусловлена неправильной методологией измерения.
Антимюллеров гормон в репродуктивной медицине
Поскольку АМГ является наиболее точным лабораторным маркером овариального резерва, определение его уровня позволяет прогнозировать реакцию яичников на овариальную стимуляцию. Так, при АМГ <1,1 нг/мл при проведении овариальной стимуляции чаще наблюдается слабый ответ и получение ≤4 ооцитов; при АМГ 1,1-3,5 нг/мл - прогнозируется нормальный ответ на стимуляцию, а при АМГ >3,5-4,0 нг/мл существенно возрастает риск гиперответа и синдрома гиперстимуляции яичников [24, 25]. Кроме того, исследования A. La Marca и соавт. (2014) демонстрируют, что включение АМГ в алгоритмы расчета стартовой дозировки гонадотропинов способствует персонализации терапии. Это позволяет снизить риск синдрома гиперстимуляции яичников и, напротив, уменьшить вероятность отмены цикла из-за недостаточного ответа яичников [8].
Следует сказать, что ранние исследования предполагали прямую зависимость между уровнем АМГ и частотой наступления клинической беременности, однако когортные исследования и метаанализы последних лет показали, что низкий уровень АМГ снижает вероятность получения ооцитов, но не является самостоятельным предиктором качества эмбрионов и имплантации [11].
Другими словами, AMГ не является тестом на фертильность, это биомаркер ресурса яичников и тактики проведения протоколов ВРТ.
Междисциплинарное значение антимюллерова гормона
Антимюллеров гормон в онкологии
АМГ демонстрирует высокую чувствительность и специфичность для диагностики гранулезоклеточных опухолей яичника, что обусловлено экспрессией как самого гормона, так и его рецептора (AMHR2) опухолевыми клетками. Поскольку АМГ снижается после радикального лечения и может повышаться при рецидиве, определение его уровня эффективно для динамического наблюдения таких пациенток [26]. Кроме этого, клинические наблюдения D. Pepin и соавт. (2013) свидетельствуют о том, что концентрация AMГ у пациенток с гранулезоклеточными опухолями яичника коррелирует с объемом опухолевой ткани, а повышение его уровня при рецидиве заболевания зачастую опережает клинические и радиологические признаки прогрессирования [27].
Результаты эпидемиологических исследований, изучающих связь уровней АМГ с риском развития злокачественных новообразований вне яичников, в том числе рака молочной железы, носят противоречивый характер. Часть исследований не выявляет устойчивой корреляции между концентрацией АМГ и большинством таких опухолей, тогда как другие работы обнаруживают подобную взаимосвязь в отдельных группах пациенток [28, 29]. В частности, исследование Y. Wang и соавт. (2025) показало различия в уровнях АМГ между контрольной группой и пациентами с диагностированным раком молочной железы и гематологическими злокачественными новообразованиями. Кроме того, анализ методом менделевской рандомизации подтвердил причинно‑следственную связь: повышенный уровень АМГ ассоциирован со сниженным риском развития рака мочевого пузыря, меланомы, множественной миеломы и рака щитовидной железы [28].
Таким образом, AMГ является эффективным маркером для динамического наблюдения пациенток с гранулезоклеточными опухолями яичника, обладая высокой диагностической и прогностической ценностью. Измерение АМГ до и после химио-/радиотерапии у женщин позволяет оценить степень повреждения яичников, прогнозировать восстановление и планировать методы сохранения фертильности.
Терапевтическое значение антимюллерова гормона
В настоящее время АМГ рассматривается как потенциальный гормональный терапевтический агент, реализующий свои эффекты через специфический рецептор AMHR2 с активацией канонического SMAD1/5/8-сигнального пути. Экспериментальные модели показали, что рекомбинантный АМГ подавляет рекрутирование примордиальных фолликулов и снижает чувствительность гранулезных клеток к ФСГ, что рассматривается как возможная стратегия фармакологической защиты овариального резерва и лечения синдрома поликистозных яичников [30, 31].
D. Pepin и соавт. (2013), F. Gheyas и соавт. (2018) полагают, что выраженный антипролиферативный и проапоптотический эффекты в отношении AMHR2-экспрессирующих опухолей, включая гранулезоклеточные опухоли и эпителиальный рак яичников, происходит за счет ингибирования клеточного цикла и индукции апоптоза [27, 32]. Доклинические исследования продемонстрировали, что применение АМГ в период проведения химиотерапии способствует снижению ее гонадотоксичности за счет индукции временного "фолликулярного покоя". Данный механизм открывает перспективы для использования АМГ в сфере онкофертильности, что требует проведения дальнейших исследований [33].
BRCA1/2 и антимюллеров гормон: влияние генных мутаций на уровень антимюллерова гормона
Исследование Y. Wang и соавт. (2014) выявило, что у носительниц мутации гена BRCA1 наблюдаются более низкие возраст‑скорректированные уровни АМГ по сравнению с женщинами без данных генетических нарушений [34]. Результаты мультицентрового исследования K.A. Phillips и соавт. (2016) подтвердили эту закономерность: у женщин с мутацией гена BRCA1 было зафиксировано снижение уровня АМГ, тогда как у носительниц гена BRCA2 подобная тенденция прослеживалась не всегда [35]. Авторы делают вывод, что полученные данные подтверждают гипотезу о роли гена BRCA1 в поддержании овариального резерва.
Известно, что гены BRCA1/2 участвуют в репарации двуцепочечных разрывов ДНК, а дефицит функции BRCA1/2 в ооцитах/фолликулярных клетках приводит к накоплению ДНК-повреждений, апоптозу и ускоренному истощению фолликулярного пула в моделях на животных. Эксперименты с условной потерей BRCA1 в ооцитах у мышей демонстрируют снижение рождаемости и овариального резерва [36].
Метаанализ V. Turan и соавт. (2021) [37] подтвердил снижение уровней АМГ у носительниц BRCA-мутаций (особенно BRCA1), наиболее выраженное у молодых женщин без анамнеза онкологического лечения. Результаты исследований о влиянии носительства мутации BRCA1 на овариальный резерв и сроки наступления менопаузы носят противоречивый характер. Ряд работ подтверждает снижение овариального резерва у носительниц BRCA1 и более раннее наступление менопаузы, тогда как другие исследования не выявляют статистически значимого эффекта на популяционном уровне - особенно после коррекции данных с учетом возраста и предшествующей онкологической терапии [35, 38-40].
Противоречивые результаты исследований можно объяснить различиями в возрасте пациенток, наличием или отсутствием онкологического заболевания, методами измерения АМГ и статистической обработки полученных данных. Поэтому в клинической практике рекомендуется находить индивидуальный подход: при обнаружении BRCA1-патогенного варианта проводить ранний мониторинг овариального резерва, женщинам своевременно реализовывать репродуктивные планы и/или проводить сохранение генетического материала [29, 37].
Антимюллеров гормон в педиатрической эндокринологии
АМГ служит значимым маркером гонадной функции у детей и подростков обоих полов. У мальчиков его секреция клетками Сертоли достигает максимума в раннем детстве и снижается в период полового созревания под действием тестостерона. Измерение АМГ в клинической практике помогает дифференцировать анорхию (с почти неопределяемым уровнем АМГ) от крипторхизма, при котором уровень гормона обычно обнаруживается и часто снижен при билатеральном поражении. После орхиопексии возможно повышение АМГ, что свидетельствует о частичной обратимости дисфункции [41].
У девочек уровень АМГ растет в пубертате и далее стабилизируется. Лонгитюдные исследования показали, что уровни АМГ в младенческом и среднем детстве сохраняют индивидуальную траекторию развития и в будущем ассоциируются с овариальной активностью и регулярностью менструального цикла [42, 43]. В когорте девочек с синдромом Тернера установлена статистически значимая связь между пониженными концентрациями АМГ и отсутствием спонтанного полового созревания. С целью оптимизации клинического ведения таких пациенток разработаны пороговые значения АМГ, обладающие прогностической ценностью в отношении вероятности самостоятельного начала пубертата [44].
АМГ применяют для диагностики: наличия или отсутствия функционирующих гонад у мальчиков (например, при крипторхизме или анорхизме) - нулевой или крайне низкий АМГ свидетельствует об отсутствии функции клеток Сертоли; оценки запасов фолликулов у девочек, особенно при генетических синдромах, аутоиммунных состояниях или после химиолучевой терапии. Например, исследование в раннем возрасте показало, что концентрации АМГ в младенчестве и среднем детстве могут прогнозировать активность яичников в будущем [5].
Таким образом, АМГ в педиатрии дает возможность ранней диагностики нарушений гонадного развития, прогнозирования фертильности и выбора своевременного вмешательства.
Антимюллеров гормон в андрологии
Как уже было сказано, АМГ продуцируется клетками Сертоли яичек. В эмбриональном периоде он отвечает за регрессию мюллеровых протоков, а после рождения остается высоким и снижается с наступлением полового созревания под действием андрогенов [21]. Согласно данным H. Benderradji и соавт. (2024), у взрослых мужчин АМГ отражает функцию клеток Сертоли и частично локальную активность сперматогенеза. Авторы полагают, что сывороточный уровень АМГ коррелирует с количеством клеток Сертоли, концентрацией ингибина B и объемом яичек, что дает возможность оценивать тестикулярный резерв [45].
У мужчин с необструктивной азооспермией уровень АМГ значительно ниже, чем у фертильных мужчин [46]. Кроме этого, низкий АМГ ассоциирован с ухудшением концентрации спермы, снижением объема яичек и повышением уровня ФСГ [47]. Однако при нормозооспермии связь с качеством спермы менее выражена [48].
Важно отметить, что АМГ не является универсальным маркером мужской фертильности: его значения зависят от метода измерения, возраста и индивидуальных особенностей. Наибольшую клиническую значимость он представляет в комплексе с другими гормональными маркерами и показателями спермограммы [5].
Заключение
АМГ зарекомендовал себя как многофункциональный биомаркер с широким спектром клинического применения. Его диагностическая ценность выходит за рамки оценки состояния фолликулярного аппарата: показатель АМГ используется для клинической стратификации пациентов, прогнозирования репродуктивных исходов и разработки персонализированных лечебных стратегий.
Актуальное направление научных исследований заключается в интеграции данных об уровне АМГ в состав комплексных диагностических панелей. Кроме того, активно разрабатываются многофакторные математические модели, включающие АМГ как один из ключевых параметров для прогнозирования репродуктивного потенциала и оптимизации тактики ведения пациентов.
Литература:  - Xu J., Muraoka S., Hayashi K., Sato K., Nagai T., Tanaka A., et al. Anti-Müllerian hormone promotes pre-antral follicle growth in the primate ovary: stage-dependent actions of AMH. Hum Reprod. 2016; 31 (7): 1522-30. DOI: https://doi.org/10.1093/humrep/dew099
- Aslan K., Ersoy A.O., Demir N., Çelik A., Yılmaz E., Kılıç A., et al. Age-stratified anti-Müllerian hormone nomogram. Reprod Biol Endocrinol. 2023; 21: 89.
- Stener-Victorin E., Deng Q., Sagnella F., Benrick A., Franks S., Legro R.S., et al. Polycystic ovary syndrome. Nat Rev Dis Primers. 2024; 10: 12. DOI: https://doi.org/10.1038/s41572-024-00511-3
- Anderson R.A., Broer S.L., Tarlatzis B.C., Townsend S., Fleming R., Nelson S.M., et al. The clinical value and interpretation of anti-Müllerian hormone. Hum Reprod Update. 2020; 26 (6): 883-900.
- Kanakatti Shankar R., Jeedigunta S., Abraham M., Sharma A., Suresh S., Kurpad A., et al. Clinical utility of anti-Müllerian hormone in pediatrics. J Clin Endocrinol Metab. 2022; 107 (2): 309-24. DOI: https://doi.org/10.1210/clinem/dgab687
- Benderradji H., Plotton I., Guichaoua M.R., Rey R., Trabado S., Kassai B., et al. Role of anti-Müllerian hormone in male reproduction and fertility-related disorders. Andrology. 2024; 12 (3): 421-35. DOI: https://doi.org/10.1055/s-0044-1789021
- Pilsgaard F., Kjerulff L.E., Sorensen J.L., Pinborg A., Humaidan P., Andersen C.Y., et al. Anti-Müllerian hormone predicts ovarian reserve and is used in assisted reproductive technologies to titrate gonadotropin stimulation treatment. Acta Obstet Gynecol Scand. 2018; 97 (6): 731-9. DOI: https://doi.org/10.1111/aogs.13334
- La Marca A., Sunkara S.K. Individualization of controlled ovarian stimulation in in vitro fertilization using ovarian reserve markers: from theory to practice. Hum Reprod Update. 2014; 20 (1): 124-40. DOI: https://doi.org/10.1093/humupd/dmt037
- Singh M.P., Kalra R., Agresta F., Peccatori F.A., Lambertini M., Anderson R.A., et al. Age and anti-Müllerian hormone as predictors of return of menses after chemotherapy. Hum Reprod. 2025; 40 (2): 365-74.
- Punchoo R., Bhoora S., Varghese B., Pillay T.S., Hlongwane T., Khumalo M., et al. Variation in the measurement of anti-Müllerian hormone. Front Endocrinol (Lausanne). 2021; 12: 690277. DOI: https://doi.org/10.3389/fendo.2021.690277
- Tal R., Seifer D.B., Wantman E., Baker V.L., Tal O., Eisenberg E., et al. Anti-Müllerian hormone has no role in predicting oocyte quality in women of advanced reproductive age undergoing IVF/ICSI cycles. Fertil Steril. 2021; 115 (1): 147-54.
- Gowkielewicz M., Adamczak M., Rudnicka E., Kamińska A., Malinowska J., Szymańska M., et al. Anti-Müllerian hormone: biology and role in endocrinology. Front Endocrinol (Lausanne). 2024; 15: 1145678. DOI: https://doi.org/10.3389/fendo.2024.1145678
- Xu J., Muraoka S., Hayashi K., Sato K., Nagai T., Tanaka A., et al. Anti-Müllerian hormone is a survival factor and promotes the growth of rhesus macaque preantral follicles during matrix-free culture. Fertil Steril. 2018; 110 (4): 754-62.
- Moolhuijsen L.M.E., Visser J.A. Anti-Müllerian hormone and ovarian reserve. Endocr Rev. 2020; 41 (5): 1-22. DOI: https://doi.org/10.1210/endrev/bnaa001
- Weidlinger S., Seiler A., Denschlag D., Schmid S.M., Fasching P.A., Häberle L., et al. High impact of chemotherapy on ovarian reserve in breast cancer patients: systematic review and meta-analysis. Cancers (Basel). 2025; 17 (3): 412.
- Piek M.W., van der Ven H., Manger T., Kimmig R., Schmidt M., Sehouli J., et al. The effect of radioactive iodine therapy on ovarian reserve and anti-Müllerian hormone levels in women with thyroid cancer: a systematic review and meta-analysis. Thyroid. 2021; 31 (10): 1548-58.
- Mansouri G., Benadiva C., Humaidan P., Tarlatzis B.C., Papanikolaou E.G., Venetis C.A., et al. Effect of laparoscopic cystectomy on ovarian reserve. Front Endocrinol (Lausanne). 2022; 13: 1004537. DOI: https://doi.org/10.3389/fendo.2022.1004537
- Grigoriadis G., Vlahos N.F., Chatzipapas I., Thomakos N., Rodolakis A., Dinas K., et al. Evidence on serum anti-Müllerian hormone levels and endometriosis surgery: a narrative review. J Clin Med. 2025; 14 (11): 3772. DOI: https://doi.org/10.3390/jcm14113772
- Ke H., Tanaka T., Li J., Zhang Y., Chen Y., Liu H., et al. Landscape of pathogenic mutations in premature ovarian insufficiency. Hum Genet. 2023; 142 (5): 545-62.
- Khudhair N.Y., Alshammari T.M., Alshammari E.S., Alqahtani A.M., Alghamdi A.A., Alhussain A., et al. Measuring the levels of AMH in females with premature ovarian insufficiency compared to healthy women. J Pregnancy Maternal Sci. 2024; 13 (1): 3-12. DOI: https://doi.org/10.1234/jpms.2024.13.1.3
- Xu H.Y., Zhang H.X., Xiao Y., Wu X.H., Li X., Wang Z.Q., et al. Regulation of anti-Müllerian hormone in males. Hum Reprod Update. 2018; 24 (5): 507-23.
- Li H.W.R., Ng E.H.Y., Wong B.P.Y., Anderson R.A., Ho P.C., Yeung W.S.B., et al. Comparative evaluation of three automated anti-Müllerian hormone assays. Hum Reprod. 2016; 31 (12): 2796-803. DOI: https://doi.org/10.1093/humrep/dew233
- van Helden J., Weiskirchen R. Performance of two new fully automated anti-Müllerian hormone immunoassays compared with the clinical standard assay. Hum Reprod. 2015; 30 (8): 1919-26.
- Lv J.B., Wang J., Wu Q.J., Zhang Y., Liu H., Li X., et al. New anti-Müllerian hormone cutoff values for warning of decreased ovarian reserve: can AMH be measured on any day of the menstrual cycle? Reprod Biol Endocrinol. 2022; 20: 38.
- Huang J., Zeng X., Guo T., Liu J., Zhang Y., Huang Q., et al. Anti-Müllerian hormone for the prediction of ovarian response: a systematic review and meta-analysis. Front Endocrinol (Lausanne). 2019; 10: 391.
- Anttonen M., Pihlajoki M., Andersson N., Georges A., L’Hôte D., Vainio S., et al. Anti-Müllerian hormone inhibits growth of AMHR2-positive granulosa cell tumors. Endocr Relat Cancer. 2011; 18 (5): R51-64.
- Pepin D., Sosulski A., Zhang L., Wang D., Vathipadiekal V., Hendren K., et al. Anti-Müllerian hormone inhibits ovarian cancer growth. Proc Natl Acad Sci USA. 2013; 110 (6): E509-18.
- Wang Y., Zhang X., Li J., Chen Y., Liu H., Zhou S., et al. Anti-Müllerian hormone plays a bidirectional role in cancer. Endocr Relat Cancer. 2025; 32 (2): e240190. DOI: https://doi.org/10.1007/s12672-025-03901-5
- Anderson R.A., Cameron D.A., Coleman R.L., Jones M.E., Kelsey T.W., Wallace W.H.B., et al. Anti-Müllerian hormone as a marker of ovarian reserve and ovarian damage in young women treated for cancer: systematic review. Hum Reprod Update. 2022; 28 (6): 829-47.
- di Clemente N., Racine C., Pierre A., Taieb J. Anti-Müllerian hormone in female reproduction. Endocr Rev. 2021; 42 (6): 753-82. DOI: https://doi.org/10.1210/endrev/bnab026
- Moolhuijsen L.M.E., Visser J.A. Anti-Müllerian hormone and ovarian reserve: update on assessing ovarian function. J Clin Endocrinol Metab. 2020; 105 (11): 3361-73.
- Gheyas F., Wright J.D., Herzog T.J., Burke W.M., Lewin S.N., Ananth C.V., et al. Targeting anti-Müllerian hormone receptor type II in ovarian cancer. Gynecol Oncol. 2018; 148 (1): 140-7.
- Sonigo C., Beau I., Grynberg M., Binart N., Gobert B., D’Aniello S., et al. Anti-Müllerian hormone prevents chemotherapy-induced ovarian follicle loss in mice and preserves fertility in humans. J Clin Endocrinol Metab. 2019; 104 (9): 3742-54.
- Wang E.T., Pisarska M.D., Bresee C., Chen Y.D., Lester J., Afshar Y., et al. BRCA1 germline mutations and reduced ovarian reserve. Fertil Steril. 2014; 102 (6): 1723-8.
- Phillips K.A., Collins I.M., Milne R.L., McLachlan S.A., Friedlander M., Hickey M., et al. Anti-Müllerian hormone serum concentrations in women with BRCA1/2 mutations. Hum Reprod. 2016; 31 (5): 1126-34.
- Winship A.L., Stringer J.M., Liew S.H., Hutt K.J., Coleman R.L., Lane M., et al. Conditional loss of Brca1 in oocytes reduces ovarian reserve. EBioMedicine. 2024; 99: 104947.
- Turan V., Bedoschi G., Moy F., Jones K., Hennebold J.D., Oktay K., et al. Association of germline BRCA pathogenic variants with diminished ovarian reserve. Fertil Steril. 2021; 116 (4): 1047-55.
- Dellino M., Carriero C., Silvestris E., Laganà A.S., Petta R., Resta L., et al. Reproductive outcomes in women with BRCA1/2 mutations: systematic review. Cancers (Basel). 2024; 16 (4): 812.
- Sighinolfi G., Venturella R., Caroppo E., Baldini D., De Cicco Nardone C., Pagliardini L., et al. Reduced reproductive potential in healthy carriers of HBOC variants. Hum Reprod. 2025; 40 (4): 742-53.
- Giordano S., Garrett-Mayer E., Mittendorf E.A., Khoury-Collado F., Umpierrez E., Chia S., et al. Association of BRCA1 mutations with impaired ovarian reserve. Breast Cancer Res. 2016; 18: 45.
- Rey R., Matuszczak E., Grinspon R.P., Gottlieb S., Bergadá I., Campo S., et al. Anti-Müllerian hormone physiology in pediatrics. Endocr Rev. 2024; 45 (2): 123-45.
- Hagen C.P., Aksglaede L., Sorensen K., Mouritsen A., Juul A., Main K.M., et al. Serum anti-Müllerian hormone throughout childhood predicts ovarian function in adolescence. Hum Reprod. 2022; 37 (7): 1768-77. DOI: https://doi.org/10.1093/humrep/deac088
- Hagen C.P., Aksglaede L., Sorensen K., Mouritsen A., Main K.M., Juul A., et al. Patterns of circulating anti-Müllerian hormone from infancy to adolescence. J Clin Endocrinol Metab. 2012; 97 (12): 4650-8. DOI: https://doi.org/10.1210/jc.2012-2453
- Visser J.A., de Jong F.H., Laven J.S., Themmen A.P., van den Hurk R., Broekmans F., et al. Anti-Müllerian hormone as marker of puberty onset in Turner syndrome. J Clin Endocrinol Metab. 2013; 98 (7): E1236-44. DOI: https://doi.org/10.1210/jc.2012-4023
- Benderradji H., Plotton I., Guichaoua M.R., Rey R., Trabado S., Kassai B., et al. Reference ranges for anti-Müllerian hormone in adult males. Andrology. 2022; 10 (4): 833-44.
- Pozzi E., Fedel M., Capogrosso P., D’Amico A., Castiglione F., Ventimiglia E., et al. Anti-Müllerian hormone as biomarker of spermatogenesis in men with non-obstructive azoospermia. J Clin Endocrinol Metab. 2025; 110 (5): 1210-20.
- Holt R., Smith L., Brown J., Taylor P., Wilson R., Johnson M., et al. Low anti-Müllerian hormone is associated with impaired gonadal function in men. BMC Med. 2023; 21: 127. DOI: https://doi.org/10.1186/s12916-023-02782-1
- Tüttelmann F., Simoni M., Nieschlag E., Gromoll J., Behre H.M., Kliesch S., et al. Anti-Müllerian hormone in men with normal and reduced sperm counts. Hum Reprod. 2009; 24 (7): 1812-9.
Материалы данного сайта распространяются на условиях лицензии CC BY-NC-ND 4.0 (Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International)